产品货号：
SYA437
中文名称：
猪钩端螺旋体病(LPP)单重荧光PCR检测试剂盒
英文名称：
产品规格：
48次/盒|96次/盒
发货周期：
1～3天
产品价格：
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一、简介：
本试剂盒用一对钩端螺旋体特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对钩端螺旋体的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
二、用途
本试剂盒适用于检测动物内脏、血液等样本中的钩端螺旋体，用于钩端螺旋体感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。
三、试剂盒组成：
四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为12个月。
五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。
六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
病死动物取心、肝、脾、肺、肾、淋巴结等组织1g；活动物用无菌注射器抽取3～5mL 血液。
6.2 样品前处理
每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液 100μL于 1.5mL灭菌离心管中；血液样本：取抗凝血下层血细胞 50μL，加入 100μL 双蒸水吹匀。
6.3 DNA提取
6.3.1 对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
6.3.2 DNA的提取也可以采用商业化DNA提取试剂盒。
注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5μL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。
七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lep-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(Lep-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件：
在60℃延伸时收集荧光信号 。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。
八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1）阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2）阳性对照(Lep-PTC)：均产生扩增曲线。
（3）以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线，表明Lep核酸阳性。
（2）Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Lep核酸阴性。
（3）如果Ct值>35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4）对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行Lep 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Lep核酸阳性；否则判为样本阴性。
九、注意事项：
（1）初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2）所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3）PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4）样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5）试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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本试剂盒用一对钩端螺旋体特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对钩端螺旋体的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
二、用途
本试剂盒适用于检测动物内脏、血液等样本中的钩端螺旋体，用于钩端螺旋体感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。
三、试剂盒组成：
| 组份 | 数量 | 规格 |
| Lep反应液(Lep-qPCR MIX) | 1管 | 672μL/管 |
| 核酸提取液(DNA Extraction) | 2管 | 1.5mL/管 |
| 酶混合物(Enzymes MIX) | 1管 | 48μL/管 |
| 阴性对照(NTC) | 1管 | 50μL/管 |
| Lep阳性对照(Lep-PTC) | 1管 | 50μL/管 |
四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为12个月。
五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。
六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
病死动物取心、肝、脾、肺、肾、淋巴结等组织1g；活动物用无菌注射器抽取3～5mL 血液。
6.2 样品前处理
每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液 100μL于 1.5mL灭菌离心管中；血液样本：取抗凝血下层血细胞 50μL，加入 100μL 双蒸水吹匀。
6.3 DNA提取
6.3.1 对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
6.3.2 DNA的提取也可以采用商业化DNA提取试剂盒。
注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5μL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。
七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lep-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
| 试剂 | 每个反应加入的量 | N个反应加入的量 |
| 荧光PCR反应液 | 14μL | N×14μL |
| 酶混合物 | 1 μL | N×1 μL |
| 总量 | 15 μL | N×15μL |
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(Lep-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件：
| 1循环 | 50℃ for 2 min | |
| 预变性 | 1循环 | 95℃ for 10 min |
| PCR扩增 | 40循环 | 95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec |
在60℃延伸时收集荧光信号 。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。
八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1）阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2）阳性对照(Lep-PTC)：均产生扩增曲线。
（3）以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线，表明Lep核酸阳性。
（2）Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Lep核酸阴性。
（3）如果Ct值>35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4）对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行Lep 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Lep核酸阳性；否则判为样本阴性。
九、注意事项：
（1）初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2）所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3）PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4）样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5）试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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